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          可裂解硫代磷酸核糖核酸(PS-RNA)修飾的自組裝生物探針用于Hg2+的快速、高靈敏檢測
          發(fā)布時間:2021-09-06     作者:axc   分享到:

          可裂解硫代磷酸核糖核酸(PS-RNA)修飾的自組裝生物探針用于Hg2+的快速、高靈敏檢測

           這種分子信標將PS-RNA連接整合到DNA發(fā)夾結構中。一個熒光團和一個猝滅劑被標記在這個DNA發(fā)夾的兩端。由于其**的親硫性,Hg2+**地切割PS-RNA連接,促進DNA發(fā)夾結構解離,并分離熒光團與猝滅劑以增強熒光。

          在本文中,我們利用一種可裂解PS-RNA修飾的自組裝生物探針(圖1),利用均相光化學發(fā)光分析來檢測Hg2+。探針將供體和受體微珠連接起來,并在615 nm處發(fā)出熒光。在Hg2+存在下,探針被裂解,微珠再次分散。因此,功能微珠和PS-RNA修飾探針的連接狀態(tài)反映了Hg2+的濃度,并導致一定程度的熒光發(fā)射。該傳感器對Hg2+顯示出較好的選擇性和靈敏度。

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          Hg2+檢測的可行性

          為了驗證該傳感器檢測Hg2+的可行性,我們引入ESI-MS來表征MS-P3對Hg2+的響應。原始基質質量為4388.31,圖2A中用紅色數(shù)字標記的一系列峰值代表原始質荷比分布。用Hg2+處理后,可以觀察到這些原始底物峰以及產物峰的變化。每個產物峰的變化不同,表明每個裂解位點與Hg2+的反應能力不同,證實了探針對Hg2+存在響應。接著,我們通過均相分析檢測了該傳感器的效果。將“Hg2+”組(含有不同濃度Hg2+樣品、探針和微珠)與“Blank”組和“None”組進行比較。如圖3A所示,“Blank”組產生的信號幾乎是“None”組的25倍,這證實了微珠被探針結合。濃度不同的Hg2+樣品信號強度減弱,但未達到“None”組的水平。在10 nM至1μM的濃度范圍內,隨著Hg2+濃度的增加,熒光信號逐步減弱。這一結果證實,使用該生物傳感器在均相分析中檢測Hg2+是完全可行的。盡管Hg2+濃度為1μM,但探針并未完全斷裂。如果每個裂解位點的裂解是獨立的,Hg2+濃度較高,PS-RNA裂解位點增多可產生更高的產率。為了證實這一推測,我們設計了兩個具有不同裂解位點的探針:P1(僅一個裂解位點)和P3(包括三個裂解位點),在相同條件下進行分析(圖3B)。P1和P3在低Hg2+濃度下對Hg2+均有反應。當Hg2+濃度高于100 nM時,P3的熒光信號大幅度減弱。序列越短,分子與微珠碰撞的概率越大。為了更**地顯示Hg2+和探針的作用,我們選擇P3進行后續(xù)研究。

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          Hg2+檢測的靈敏度和選擇性

          在良好的條件下,我們用不同濃度的Hg2+對該探針進行傳感性能檢測。預處理劑和超純水的空白組熒光強度高,穩(wěn)定性好。然而,在Hg2+濃度不同的樣品中,熒光強度降低并不明顯。盡管探針被Hg2+切割,但供體微珠和受體微珠沒有很好地重新分散。因此,在測試前,我們對每種混合物進行了超聲波處理。因此,在5nM至5μM的線性范圍內,隨著Hg2+濃度增加,熒光強度線性降低。Hg2+的線性校準曲線如圖4A所示,檢測限(LOD)為1.4nM。接著,我們進行了干擾離子研究。如圖4B所示,除Ag+外,其它金屬離子的熒光信號略有降低。Ag+具有較強的親硫性,能切割探針;然而,在存在Hg2+的情況下,這種效應并不**。與其他金屬離子相比,該體系對Hg2+具有優(yōu)良的特異性。

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          綜上所述,我們開發(fā)了一種均質自組裝生物傳感器,用于檢測水溶液中Hg2+。用PS-RNA探針連接供體微珠和受體微珠,并發(fā)生光致化學發(fā)光。Hg2+的傳感策略基于PS-RNA切割位點和Hg2+之間的切割反應引起的微珠分離。由于LOD較低,可以忽略其他金屬離子的干擾,因此該傳感器對Hg2+的檢測具有良好的靈敏度和選擇性。此外,使用預處理試劑,檢測過程縮短為三個步驟:混合、超聲處理和檢測?紤]到檢測限低、操作簡單和快速檢測,這種均質自組裝生物傳感器有望在非極端條件下快速檢測環(huán)境水體中Hg2+。


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